在細胞實驗中，活率計數(shù)是評估細胞狀態(tài)的核心指標，臺盼藍染色與 AOPI 熒光染色作為主流方法，常讓研究者在選擇時陷入權(quán)衡。事實上，二者并無絕對優(yōu)劣，僅存在場景適配差異 ——博大博聚-全自動細胞計數(shù)儀，正是能精準支撐兩種需求的全能工具。

臺盼藍染色作為沿用數(shù)十年的經(jīng)典方法，憑借操作便捷、成本可控的優(yōu)勢，至今仍是基礎(chǔ)實驗室的常用染色方法。其原理是利用活細胞完整的細胞膜對染料的排斥作用：活細胞不被染色，死細胞因細胞膜破損被染成藍色，整個染色-計數(shù)流程可在幾分鐘內(nèi)完成。對于常規(guī)細胞傳代、教學實驗等對效率要求高的場景，這種“即染即測"的特性尤為實用。

但臺盼藍染色的局限性也需正視：

① 時效性嚴格：染色后需在10分鐘內(nèi)完成檢測。這是因為活細胞對臺盼藍的排斥是暫時的——長時間暴露于染料中，臺盼藍的細胞毒性會逐漸破壞活細胞膜完整性，導致原本存活的細胞被染色，最終使活率檢測值偏低。在高通量實驗中，若批量樣本處理間隔過長，極易出現(xiàn)前后數(shù)據(jù)偏差。

②-復(fù)雜樣本適應(yīng)性弱：對于直徑較小的細胞（如外周血單個核細胞，PBMC）或含大量雜質(zhì)的樣本，臺盼藍的明場檢測模式易受干擾。由于雜質(zhì)與細胞在形態(tài)、顏色上區(qū)分度低，顯微鏡下難以精準識別，可能導致漏計（誤將小細胞當作雜質(zhì)）或錯計（誤將雜質(zhì)當作細胞）。

此時，AOPI 熒光染色的優(yōu)勢便凸顯出來。AOPI熒光染色通過兩種核酸染料的協(xié)同作用實現(xiàn)精準區(qū)分：吖啶橙（AO）可穿透所有細胞膜，與活細胞、死細胞的核酸結(jié)合，在488nm 激發(fā)光下發(fā)出綠色熒光；碘化丙啶（PI）同樣能與核酸結(jié)合，但僅能通過破損的細胞膜進入死細胞，在535nm激發(fā)光下發(fā)出紅色熒光——最終呈現(xiàn) “活細胞綠、死細胞紅" 的清晰信號。

博大博聚-全自動細胞計數(shù)儀搭載明場+雙色熒光通道：明場通道適配臺盼藍染色，雙色熒光通道：488nm 激發(fā) / 525nm 發(fā)射通道捕捉 AO 綠色信號，535nm 激發(fā) / 610nm 發(fā)射通道識別 PI 紅色信號，即使是早期凋亡（細胞膜輕微破損）的細胞也能被精準判定。更重要的是，熒光信號的特異性讓 AOPI 對復(fù)雜樣本的耐受性遠超臺盼藍：處理含大量細胞碎片、血清顆粒的樣本時，雜質(zhì)不會產(chǎn)生熒光信號，不干擾計數(shù)；

當然，AOPI 熒光染色也有需注意的短板：

① 成本較高：AOPI熒光染料成本顯著高于臺盼藍染料；
② 操作要求更嚴：熒光染料易受強光淬滅，需避光操作（染色后、檢測前需避免直射光），否則可能因信號衰減導致計數(shù)偏差。

因此，在基礎(chǔ)實驗、學生訓練等對成本敏感且樣本簡單的場景，臺盼藍仍是性價比之選；而在生物制藥（如 CAR-T 細胞制備）、復(fù)雜樣本分析（如 PBMC 活性檢測）等對精度要求嚴苛的場景，AOPI 顯然更具優(yōu)勢。

博大博聚-全自動細胞計數(shù)儀通過模塊化設(shè)計實現(xiàn) “一鍵切換"：臺盼藍染色模式支持高通量快速計數(shù)，AOPI熒光染色模式搭載 AI 智能算法（可自動識別細胞與雜質(zhì)、拆分聚團細胞），兼顧效率與精度。無論你是高校實驗室的教學研究者，還是生物制藥企業(yè)的GMP級質(zhì)控人員，都能找到適配方案。

選擇哪種染色？答案藏在你的實驗需求里。而博大博聚-全自動細胞計數(shù)儀，始終是那個懂你所需的可靠伙伴，讓每一次活率計數(shù)都精準高效。